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DNA Clean and Concentrator-5

公司名称: ZYMO RESEARCH
产品编号: D4013
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Analyzing (Re)Capping of mRNA Using Transcript Specific 5' End Sequencing
Author:
Date:
2020-10-20
[Abstract]  The 5′ cap is a ubiquitous feature of eukaryotic mRNAs. It is added in the nucleus onto newly synthesized pre-mRNA, and in the cytoplasm onto mRNAs after decapping or endonuclease cleavage. Cytoplasmic recapping can occur after loss of the cap at the native 5′ end, or downstream within the body of the mRNA. The identification and location of recapping events is key to understanding the functional consequences of this process. Here we present an approach that addresses this problem, using the Lexogen TeloPrime® cDNA synthesis kit to tag recapped 5′ ends. TeloPrime uses a proprietary ... [摘要]  [摘要]5′cap是真核mRNAs普遍存在的特征。它被添加到新合成的pre-mRNA的细胞核中,并在去盖或核酸内切酶切割后加入到mRNAs的细胞质中。细胞质重拾可发生在5′端或mRNA体下游的cap缺失后。识别和定位重述事件是理解该过程的功能后果的关键。这里我们提出了一种解决这个问题的方法,使用Lexogen TeloPrime®cDNA合成试剂盒来标记重述的5′端。TeloPrime使用一种专有的DNA连接酶,在cDNA的3′端加入一个双链DNA寡核苷酸,同时与mRNA碱基配对。寡核苷酸在mRNA 5′端有一个与m7G弱碱基配对的不成对C残基。然后用引物对附加的寡核苷酸和感兴趣的mRNA进行双链cDNA的PCR扩增。得到的产物是凝胶纯化和直接测序(如果是单个带)或克隆和测序。连接的寡核苷酸和靶mRNA连接处的序列提供了cap在相应转录物上的位置。此方法适用于所有封顶转录本。它可以与Sanger测序一起用于少量的转录物,也可以用于Illumina库测序。

[背景]N7-甲基鸟苷帽是所有真核mRNAs的一个显著特征。与cap结合的蛋白质在mRNA生命周期的各个阶段发挥作用,包括核加工、输出、翻译和mRNA衰变。5′cap以共转录方式添加到所有mRNAs中,并开发了许多全基因组技术(例如,基因表达的Capped分析,或CAGE)(Morioka等人,2020年),这些技术利用末端末端的鉴定来标记转录起始位点。除了标记转录起始位点外,约25%的笼状标签映射到剪接内含子的下游(Djebali等人,2012年)。生物化学基础的证据来自我们实验室2009年的鉴定:一种细胞质复合体能够将N7甲基鸟苷帽恢复到5′-单磷酸末端的转录物上,但不能恢复到5′-羟基末端的转录物上(Otsuka等人,2009年)。细胞质封顶由一种复合酶催化,包括封盖酶(RNGTT)、帽甲基转移酶(RNMT)及其激活亚单位(RAM),以及一种将去盖转录物的5′-单磷酸末端转化为5′-二磷酸底物以进行GMP添加的激酶(Trotman和Schoenberg,2019)。我们的早期工作是基于在GMP添加步骤中阻断细胞质封盖的显性负型封盖酶的使用。该蛋白的表达导致出现许多未封顶的转录本,其末端使用5'-种族定位到下游笼状标签附近(Kiss等人,2015年;Berger等人,2019年)。虽然令人鼓舞,但这种方法有三个主要缺点:a)它需要分离带帽和未封顶的rna,b)它假设未封顶的转录本保持足够稳定,可以被检测到,以及c)它假设以这种方式检测到的未封顶末端经历了有限的额外的核外溶核修剪。 ...

Low-input Capture-C: A Chromosome Conformation Capture Assay to Analyze Chromatin Architecture in Small Numbers of Cells
Author:
Date:
2017-12-05
[Abstract]  Chromosome conformation capture (3C) techniques are crucial to understanding tissue-specific regulation of gene expression, but current methods generally require large numbers of cells. This protocol describes two new low-input Capture-C approaches that can generate high-quality 3C interaction profiles from 10,000-20,000 cells, depending on the resolution used for analysis. [摘要]  染色体构象捕获(3C)技术对于理解基因表达的组织特异性调节是至关重要的,但是目前的方法通常需要大量的细胞。 该协议描述了两种新的低输入Capture-C方法,根据用于分析的分辨率,可以从10,000-20,000个细胞生成高质量的3C相互作用谱。

【背景】3C技术在调查调控元件之间的核组织和结构相互作用与基因活性之间起关键作用(Dekker等人,2002)。 由于这些相互作用是高度组织特异性的,3C定义的纯化细胞群进行3C实验是至关重要的。

3C技术的一个主要局限性是所需要的大量细胞:目前的方法使用了10万到10万个细胞(Davies等人,2017)。 这些数字中不包含许多原发性组织和稀有细胞群。 因此,我们开发了两种新的低输入Capture-C方法,可以从最大分辨率的〜20,000个细胞(单独的DpnII片段)和使用基于开窗分析的约10,000个细胞产生高质量的相互作用谱(Oudelaar等人 。,2017)。

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