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ChemiDocTM Touch Imaging System

公司名称: Bio-Rad Laboratories
产品编号: ChemiDocTM Touch Imaging System
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Biochemical Analysis of Dimethyl Suberimidate-crosslinked Yeast Nucleosomes
Author:
Date:
2018-03-20
[Abstract]  Nucleosomes are the fundamental unit of eukaryotic chromosome packaging, comprised of 147 bp of DNA wrapped around two molecules of each of the core histone proteins H2A, H2B, H3, and H4. Nucleosomes are symmetrical, with one axis of symmetry centered on the homodimeric interaction between the C-termini of the H3 molecules. To explore the functional consequences of nucleosome symmetry, we designed an obligate pair of H3 heterodimers, termed H3X and H3Y, allowing us to compare cells with single or double H3 alterations. Our biochemical validation of the heterodimeric X-Y interaction included ... [摘要]  核小体是真核染色体包装的基本单元,由围绕核心组蛋白H2A,H2B,H3和H4中的每一个的两个分子包裹的147bp DNA组成。 核小体是对称的,一个对称轴以H3分子的C-末端之间的同源二聚体相互作用为中心。 为了探索核小体对称性的功能性后果,我们设计了一对特异性H3异二聚体,称为H3X和H3Y,使我们能够比较具有单一或双重H3改变的细胞。 我们对异二聚体X-Y相互作用的生物化学验证包括使用二甲基琥珀三酸酯(DMS)进行的核内H3交联。 在这里,我们提供了使用DMS来分析酵母核小体的详细方案。

【背景】组蛋白的翻译后修饰影响染色体生物学的各个方面,包括转录,复制,修复和重组。因为核小体包含每个核心组蛋白的两个拷贝,所以修饰可以是对称的(在两个H3尾部上的相同修饰,例如,在核小体内的两个H3尾部上的K27me(Voigt等人

对于单个核小体内H3X-H3Y相互作用的生化验证,我们生成了表达细菌生物素连接酶BirA,N-末端V5-标记的H3X和N-末端生物素接受表位标记的H3Y的酵母菌株(Beckett等人, 1999)。 ...

Determination of H+-ATPase Activity in Arabidopsis Guard Cell Protoplasts through H+-pumping Measurement and H+-ATPase Quantification
Author:
Date:
2017-12-20
[Abstract]  The opening of stomata in plants in response to blue light is driven by the plasma membrane H+-ATPase in guard cells. To evaluate the activation of the H+-ATPase in vivo, we can use H+-pumping by guard cells in response to blue light and fusicoccin. To do this, it is required to prepare a large amount of guard cell protoplasts and measure H+-pumping in the protoplasts. It is also necessary to determine the protein amount of H+-ATPase. In this protocol, we describe the procedures required for these preparations and measurements. [摘要]  响应蓝光的植物气孔的开放是由保卫细胞中的质膜H + -ATPase驱动的。 为了评价体内H + -ATP酶的激活,我们可以使用H + +保卫细胞对蓝光的响应,fusicoccin。 为此,需要制备大量的保卫细胞原生质体,并测量原生质体中的H + - 抽吸。 还需要确定H + -ATP酶的蛋白质量。 在这个协议中,我们描述了这些准备和测量所需的程序。

【背景】响应于蓝光的气孔的开放是由穿过保卫细胞质膜上的H +介导的膜超极化驱动的(Assmann等,1985; Shimazaki等人,1986),并且是由质膜H + -ATP酶引起的(Kinoshita和Shimazaki,1999)。 H + -ATP酶在膜上产生电化学梯度,并提供植物细胞中许多次级运输所需的能量。然而,测量体内H + -ATP酶活性并不容易。利用保卫细胞的蓝光敏感特性,我们的方法可以将体内H +泵送作为体内测量H + + 使用拟南芥保卫细胞原生质体的ATP酶活性(Ueno等人,2005)。与通过蛋白质印迹(Yamauchi等人,2016)的Hβ+ -ATPase定量一起,该方法允许比较Hβ+ -ATPase活性不同的条件或突变背景。

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