| Heterologous Expression and Purification of the CRISPR-Cas12a/Cpf1 Protein
|
|
Author:
Date:
2018-05-05
[Abstract] This protocol provides step by step instructions (Figure 1) for heterologous expression of Francisella novicida Cas12a (previously known as Cpf1) in Escherichia coli. It additionally includes a protocol for high-purity purification and briefly describes how activity assays can be performed. These protocols can also be used for purification of other Cas12a homologs and the purified proteins can be used for subsequent genome editing experiments.
Figure 1. Timeline of activities for the ...
[摘要] 该协议提供了分步说明（图1），用于在大肠杆菌中异源表达新西兰弗朗西斯菌弗朗西丝菌Cas12a（以前称为Cpf1）。 它还包括一个高纯度纯化方案，并简要介绍如何进行活性测定。 这些方案也可以用于其他Cas12a同系物的纯化，并且纯化的蛋白质可以用于随后的基因组编辑实验。
![“”src]()
图1.从大肠杆菌 异源表达和纯化<弗朗西斯弗朗西丝菌 Cas12a（FnCas12a）的活动时间表
【背景】原核CRISPR-Cas免疫系统通过使用CRISPR RNA（crRNA）作为外源DNA或RNA的序列特异性靶向的指导来提供针对病毒和质粒的保护（van der Oost等人，2014; Marraffini ，2015）。 1类CRISPR-Cas系统（包含I型，III型和IV型）通常形成多亚基蛋白-cRNA效应复合物，而2类系统（包含II型，V型和VI型）依赖于单个crRNA-引导的效应物核酸酶用于目标干扰（Mohanraju et al。 2016年）。
...
|
|
|
| Chromatin Affinity Purification (ChAP) from Arabidopsis thaliana Rosette Leaves Using in vivo Biotinylation System
|
|
Author:
Date:
2018-01-05
[Abstract] Chromatin Affinity Purification (ChAP) is widely used to study chromatin architecture and protein complexes interacting with DNA. Here we present an efficient method for ChAP from Arabidopsis thaliana rosette leaves, in which in vivo biotinylation system is used. The chromatin is digested by Micrococcal Nuclease (MNase), hence the distribution of nucleosomes is also achieved. The in vivo biotinylation system was initially developed for Drosophila melanogaster (Mito et al., 2005), but the presented protocol has been developed specifically for Arabidopsis ...
[摘要] 染色质亲和纯化（ChAP）被广泛用于研究染色质结构和与DNA相互作用的蛋白质复合物。 在这里，我们提出了一种有效的从拟南芥莲座叶中ChAP的方法，其中使用了体内生物素化系统。 染色质被Micrococcal核酸酶（MNase）消化，因此核小体的分布也被实现。 体内生物素化系统最初是为黑腹果蝇而开发的（Mito et al。2005），但是所提出的方案是专门为 拟南芥（Sura et。，2017）。
【背景】染色质免疫沉淀（ChIP）成为研究染色质结构和组织的最重要和最常用的技术之一。但是，它需要高质量的抗体，不会与非特异性靶标发生交叉反应。在含有细胞壁并富含光合作用相关化合物和蛋白质的植物中，这是相当难以实现的，这些化合物和蛋白质经常引起交叉反应性问题。另一方面，获得稳定的转基因生物是植物常规和容易的策略。由于这些原因，大多数植物研究人员选择基因标签，获得融合蛋白，并用ChIP替代方法即染色质亲和纯化（ChAP）来研究染色质。 ChAP技术已被证明在植物染色质研究中非常有效（Zentner和Henikoff，2014）。此外，它通常比经典ChIP便宜，因为它不需要产生抗体，并且通常比ChIP更有效，因为标签以比直接针对感兴趣的蛋白质产生的抗体更高的亲和力被识别。 ...
|
|
|
| Terminal Restriction Fragments (TRF) Method to Analyze Telomere Lengths
|
|
Author:
Date:
2015-12-05
[Abstract] Chromosome ends - telomeres - are a focus of intensive research due to their importance for the maintenance of chromosome stability. Their shortening due to incomplete replication functions as a molecular clock counting the number of cell divisions, and ultimately results in cell-cycle arrest and cellular senescence. Determination of telomere lengths is an essential approach in telomere biology for research and diagnostic applications. Terminal Restriction Fragments (TRF) analysis is the oldest approach to analyze telomere lengths and remains the “gold standard” even in current studies. This ...
[摘要] 染色体末端 - 端粒是密集研究的焦点，因为它们对维持染色体稳定性的重要性。它们由于不完全复制而缩短作为计数细胞分裂数目的分子时钟，最终导致细胞周期停滞和细胞衰老。端粒长度的测定是端粒生物学中用于研究和诊断应用的基本方法。末端限制性片段（TRF）分析是分析端粒长度的最古老的方法，并且即使在目前的研究中仍然是"金标准"。该技术依赖于重复的小卫星端粒单元不含有限制酶的靶位点的事实。因此，端粒保持相对长的片段（TRF），而基因组DNA被消化成短片段。然后通过与放射性标记的端粒探针杂交显现端粒DNA的片段。由于TRF除了端粒外还包括直到第一限制性位点的端粒相关DNA的短区域，结果稍微偏向更高的TRF值。因此，建议使用频繁的刀具或其混合物，以尽量减少这种差异。此外，通过使用TRF分析，可以区分真正（末端）端粒与间质端粒重复（ITR）（Richards和Ausubel，1988）。在该方法中，首先将BAL31消化应用于高分子量DNA。酶从其末端逐渐降解线性DNA。然后用一种或多种限制酶消化降解的DNA，并通过凝胶电泳分离片段。印迹后，用末端标记序列或端粒序列探测膜。真正的TRF可以区别于ITR，因为它们随着BAL31消化时间的增加而逐步缩短，而ITR是BAL31抗性的。在时间零时的TRF BAL31消化模式表示近似端粒长度（Fajkus等人，2005）。
|
|
|